常規(guī)涂片染色一般都有2張或2張以上的涂片,當診斷需要再行其他特殊染色或免疫細胞化學染色時,需要將其中一張片脫色來重新染色; 一些舊片因褪色,或染色錯誤,也需要將其脫色后再進行重染。(1)去除蓋玻片: 將片子先輕微加熱,使中...[繼續(xù)閱讀]

    1.離心沉淀 將標本液體上半部輕輕倒掉,保留底部沉淀物20mL。搖勻后注入2～4支錐形離心管內(nèi),平衡后中速(2000轉(zhuǎn)/分),離心5～10min。2. 標本取材 將離心后上清液用毛細吸管吸出棄掉,若為血性胸、腹腔積液則吸取紅細胞沉淀層與上清液...[繼續(xù)閱讀]

    (1)取離心沉淀標本,用毛細吸管滴1小滴位于載玻片1/3處,即置于載玻片的一側(cè)端。(2)然后取一玻片與載玻片呈30° 的夾角,將標本液夾在兩玻片之間向前推進,涂片形成頭、體、尾三部分,腫瘤細胞多數(shù)集中在尾部。...[繼續(xù)閱讀]

    1. 固定液選擇 細胞涂片以高濃度的固定液為佳,常用乙醇-乙醚固定液。高濃度的固定液無論是細胞形態(tài)的保存,還是細胞在玻片上的黏附都優(yōu)于其他固定劑。2. 固定方法 涂片制作完成后應(yīng)立即垂直投進細胞固定液內(nèi)固定,固定液必須...[繼續(xù)閱讀]

    染色前先按次序整理申請單,并與玻片核對名字、編號及玻片數(shù)量。細胞學常規(guī)染色方法首選巴氏染色法,大量婦科宮頸細胞學檢查或穿刺涂片亦可用常規(guī)HE染色。血液細胞學涂片檢查可用瑞氏染色、吉姆薩染色。...[繼續(xù)閱讀]

    (1)細胞樣本離心后,如果細胞數(shù)量較多,制作涂片時,除了吸取底層細胞外,還應(yīng)吸取小許上層液體混合后再涂片,避免細胞過多重疊,引起細胞脫落。(2)用做推片的載玻片與液體接觸的角度大小,直接影響涂片的均勻與細胞成分分布的厚度...[繼續(xù)閱讀]

    (1)尿液細胞涂片制作,標本采集和處理,尿液采集需要避免清晨第一次晨尿,因晨尿內(nèi)會有較多殘渣和退行性變的細胞。男性患者可自行排尿,收集中、后段排出尿;女性患者一般采用導管尿,或收集中、后段尿。(2)標本收集后在1～2h內(nèi)完...[繼續(xù)閱讀]

    (1)將尿液倒去上清液,留下50～100mL底層尿液分別注入2支50mL尖底離心管內(nèi)。(2)經(jīng)平衡配置后放入離心機以2000轉(zhuǎn)/分,離心7min,2次。(3)傾去標本的上清液,或用毛細玻璃吸管吸去上清液。(4)將沉渣用玻璃棒或吸管攪勻沉淀物。(5)吸取1～2滴...[繼續(xù)閱讀]

    (1)涂片制作完成后應(yīng)立即垂直投進等量的乙醇-乙醚固定液固定。(2)細胞成分少,標本可潮干或半潮干固定。...[繼續(xù)閱讀]

    尿液細胞涂片染色方法首選巴氏染色法,選用EA36染液或EA50染液,細胞核和胞質(zhì)著色鮮艷、染色質(zhì)清晰。...[繼續(xù)閱讀]